Germination and initial in vitro development of explants of red strawberry-guava

Authors

  • Samila Silva Camargo Universidade do Estado de Santa Catarina, Lages, SC. Brasil.
  • Aline Meneguzzi Universidade do Estado de Santa Catarina, Lages, SC. Brasil.
  • Lediane Bisol Universidade do Estado de Santa Catarina, Lages, SC. Brasil.
  • Gabriela Maciel Paiano Universidade do Estado de Santa Catarina, Lages, SC. Brasil.
  • Maicon Magro Universidade do Estado de Santa Catarina, Lages, SC. Brasil.
  • Leo Rufato Universidade do Estado de Santa Catarina, Lages, SC. Brasil.

DOI:

https://doi.org/10.5965/2238117118e2019006

Keywords:

Psidium cattleyanum Sabine, seeds, micropropagation, luminosity, dark, fractionation

Abstract

Among the native fruit trees of the South of Brazil, the red strawberry guava (Psidium cattleyanum Sabine) of the Myrtaceae family and it is considered a native forest species of great importance in this region. The strawberry guava is usually propagated through sexual reproduction, however, few studies have been done to optimize the propagation of this native species. In addition to this problem, many studies with woody plants have shown positive results with propagation through tissue culture techniques. In this way, the objective was to verify the in vitro germination of red strawberry guava and the initial development of the explants with the use of the micropropagation technique. A completely randomized design with 3 x 2 factorial arrangement was used, with three forms of seed fractionation (without cutting, longitudinal and transverse cutting) and two conditions of light intensities (presence and absence of light), totaling six treatments with 10 replications of four seeds each. After 14 days of the experiment were evaluated oxidation (%) and sowing (cm). The seeds germination rate (%), mean root length (cm), length of the largest root (cm), length of explant and number of roots and leaves were analyzed with 240 days. It was concluded that just a single seed of Psidium cattleyanum, when being fractionated, maintains the germinative capacity and can produce more than one normal seedling, in order to have a larger number of seedlings, from a smaller number of seeds. In addition, it was verified that regardless of the fractionation or not of the red spider seeds, direct light conditions provided roots of greater length, as well as a larger number of leaves in the explants.

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References

ALTOÉ JA et al. 2011. Propagação de araçazeiro e goiabeira via miniestaquia de material juvenil. Bragantia 70: 312-318.

AMADOR TS & BARBEDO CJ. 2011. Potencial de inibição da regeneração de raízes e plântulas em sementes germinantes de Eugenia pyriformis. Pesquisa Agropecuária Brasileira 46: 814-821.

BASKIN CC & BASKIN JM. 1998. Seeds: ecology, biogeography, and evolution of dormancy and germination. San Diego: Academic Press. 666p.

CAMARGO SS et al. 2015. Fitorreguladores e espectros de luz na micropropagação de Oncidium baueri Lindl. Ciência Rural 45: 2007-2012.

CANESIN A et al. 2012. Bioestimulante no vigor de sementes e plântulas de faveiro (Dimorphandra mollis Benth.). Cerne 18: 309-315.

CARNEIRO RMDG et al. 2007. Resistance to Meloidogyne mayaguensis in Psidium spp. Accessions and their Grafting Compatibility with P. guajava cv. Paluma. Fitopatologia Brasileira 32: 281-284.

CARVALHO CAL et al. 2009. Tópicos em Ciências Agrárias. Cruz das Almas: UFRB. 296p.

DANNER MA et al. 2010. Repetibilidade de caracteres de fruto em araçazeiro e pitangueira. Ciência Rural 40: 2086-2091.

DELGADO LP et al. 2010. Potential for regeneration and propagation from cut seeds of Eugenia (Myrtaceae) tropical tree species. Seed Science and Technology 38: 624-634.

DONADIO LC et al. 2007. Frutas brasileiras. Jaboticabal: Novos Talentos, 2002. 288p. Espécies Florestais. In: BORÉM, A. (Ed.) Biotecnologia florestal. Viçosa: UFV. p.55-74.

DOUSSEAU S et al. 2008. Germinação de sementes de tanchagem (Plantago tomentosa lam.): influência da temperatura, luz e substrato. Ciência e Agrotecnologia 32: 438-443.

FACHINELLO JC et al. 1993. Efeito do ácido indolbutírico e PVP no enraizamento de estacas de araçazeiro (Psidium cattleyanum Sabine) em diferentes substratos. Revista Brasileira de Fisiologia Vegetal 5: 1990-1993.

FRANZON RC et al. 2009. Araçás do gênero Psidium: principais espécies, ocorrência, descrição e usos. Planaltina: Embrapa Cerrados. 48p. (Embrapa Cerrados. Documentos, 266).

FREITAS RMO et al. 2009. Efeito dos tratamentos de oxidação em Aloysia virgata. Revista Caatinga 22: 176-179.

HOSSEL C et al. 2017a. Estratificação e ácido indolbutírico na germinação de sementes de araçazeiro vermelho. Revista Brasileira de Tecnologia Agropecuária 1: 52-57.

HOSSEL C et al. 2017b. Tempo e temperatura da pré-secagem pós hidrocondicionamento em sementes de araçazeiro ‘Ya-Cy’. Revista Brasileira de Tecnologia Agropecuária 1: 45-51.

JUN NJ et al. 2011. Cytotoxic activity of β-caryophyllene oxide isolated from Jeju Guava (Psidium cattleyanum Sabine) leaf. Records of Natural Products 5: 242-246.

JUSTO CF et al. 2007. Efeito da secagem, do armazenamento e da germinação sobre a micromorfologia de sementes de Eugenia pyriformis Camb. Acta Botânica Brasílica 21: 539-551.

KERBAUY GB. 2008. Fisiologia Vegetal. 2.ed. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan. 431p.

KOLLER D. 1972. Environmental control of seed germination. New York: Academic Press. 447p.

KROLOW ACR & AQUINI D. 2010. Sabor nativo: Inovações e transferência de tecnologia em rede de microempresas e agroindústrias familiares na região de Pelotas-Brasil. In: V Simpósio Nacional do Morango; IV Encontro sobre pequenas frutas e frutas nativas do Mercosul. Palestras e resumos... Pelotas: Embrapa Clima Temperado. p.85-89.

MARTINOTTO C et al. 2007. Efeito da escarificação e luminosidade na germinação in vitro de sementes de cagaiteira (Eugenia dysenterica DC.). Ciência e Agrotecnologia 21: 319-325.

MENEZES NL et al. 2004. Germinação de sementes de Salvia splendens Sellow em diferentes temperaturas e qualidades de luz. Revista Brasileira de Sementes 26: 32-37.

MURASHIGE T & SKOOG F. 1962. A revised medium for rapid growth and biossay with tabacco tissue cultures. Physiologia Plantarum 15: 473-497.

MURASHIGE T. 1974. Plant propagation through tissue cultures. Annual Review of Plant Physiology 25: 135-166.

NACHTIGAL JC & FACHINELLO JC. 1995. Efeito de substratos e do ácido indolbutírico no enraizamento de estacas de araçazeiro (Psidium cattleyanum Sabine). Revista Brasileira de Agrociência 1: 34-39.

PEIXOTO CP et al. 2011. Ação da giberelina em sementes pré-embebidas de mamoneira. Comunicata Scientiae 2: 70-75.

REGO SS et al. 2009. Germinação de sementes de Blepharocalyx salicifolius (H.B.K.) Berg. em diferentes substratos e condições de temperatura, luz e umidade. Revista Brasileira de Sementes 31: 212-220.

SADAVA D et al. 2009. Vida: a ciência da biologia. Porto Alegre: Artmed.

SANTOS CAC et al. 2013. Germinação de sementes e vigor de plântulas de maracujazeiro amarelo submetidos à ação do ácido giberélico. Bioscience Journal 29: 400-407.

SANTOS MS et al. 2007. Caracterização do suco de araçá vermelho (Psidium cattleianum Sabine) extraído mecanicamente e tratado enzimaticamente. Acta Scientiarum Agronomy 29: 617-621.

SCALON SPQ et. al. 2006. Germinação e crescimento inicial da muda de orelhas de macaco: efeitos de tratamentos químicos e luminosidade. Revista Árvore 34: 529-536.

SILVA CV et al. 2003. Fracionamento e germinação de sementes de uvaia (Eugenia pyriformis Cambess – Myrtaceae). Revista Brasileira de Botânica 26: 213-221.

SILVA CV et al. 2005. Fracionamento e germinação de sementes de Eugenia. Revista Brasileira de Sementes 27: 86-92.

SILVA FJ et al. 2016. Efeito da luz na germinação e desenvolvimento de plântulas de pinhão-manso (Jatropha curcas L.) de distintas procedências. Hoehnea 43: 195-202.

SOUZA JA et al. 2006. Efeito do tipo de ramo e do regime de luz fornecido à planta matriz no estabelecimento in vitro de araçazeiro cv. “Irapuã”. Ciência Rural 36: 1920-1922.

TOMAZ ZFP et al. 2011. Tratamentos pré-germinativos em sementes de araçazeiro (Psidium cattleyanum Sabine L.). Revista Brasileira de Agrociência 17: 60-65.

TREVISAN R et al. 2004. Propagação de plantas frutíferas nativas. In: RASEIRA MCB et al.(Eds.). Espécies frutíferas do sul do Brasil. Pelotas: EMBRAPA. p.49- 71.

VICTÓRIO CP & LAGE CLS. 2009. Germinação e desenvolvimento pós-germinativo in vitro de Calendula officinalis L. sob diferentes qualidades de luz. Revista de Biologia e Farmácia 3: 81-87.

VICTÓRIO CP & LAGE CLS. 2009. Efeitos da qualidade de luz na germinação e desenvolvimento inicial in vitro de Phyllanthus tenellus. Revista Ciência Agronômica 40: 400-405.

XAVIER A et al. 2007. Micropropagação e enxertia in vitro de espécies florestais, pp. 55-74. In: A. BORÉM (ed). Biotecnologia Florestal. Viçosa: [s.n.].

ZANELA J et al. 2012. Biofilmes e pré-embebição de sementes na germinação do araçazeiro 'Ya-Cy'. Revista Brasileira de Agrociência 18: 229-232.

Published

2020-07-28

How to Cite

CAMARGO, Samila Silva; MENEGUZZI, Aline; BISOL, Lediane; PAIANO, Gabriela Maciel; MAGRO, Maicon; RUFATO, Leo. Germination and initial in vitro development of explants of red strawberry-guava. Revista de Ciências Agroveterinárias, Lages, v. 18, n. 5, p. 6–12, 2020. DOI: 10.5965/2238117118e2019006. Disponível em: https://periodicos.udesc.br/index.php/agroveterinaria/article/view/10412. Acesso em: 4 nov. 2024.

Issue

Section

XII Santa Catarina Forestry Symposium

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